Souris albinos

Atlas Les planches 1-13 illustrent de nombreuses caractéristiques décrites dans ce chapitre en utilisant des souris albinos de race aléatoire (NIH Swiss et CD1). Le choix de NIH Swiss s’explique par l’utilisation de cette souche par Kaufmann dans « The Atlas of Mouse Development « 3 et par la disponibilité d’une grande banque de sites d’implantation archivés et inclus en paraffine provenant de cette souche dans le laboratoire du Dr Yamada, qui ont été utilisés pour la préparation des images histologiques pour cet Atlas (chapitre 3). Cependant, des pertes fœtales significatives et inexpliquées sont survenues lors de grossesses de souris NIH Swiss achetées début 2011 pour la préparation des images anatomiques brutes de cet Atlas. Nous sommes passés à des souris CD1, une souche apparentée, pour compléter les illustrations d’anatomie brute de l’utérus de souris gravide normal et sain.

Plaque 2. Le bouchon de copulation.

Après l’accouplement, les sécrétions de l’appareil reproducteur de la souris de laboratoire mâle durcissent dans l’appareil reproducteur de la femelle. C’est ce qu’on appelle le « bouchon de copulation ». Il indique l’accouplement mais pas la conception ou la grossesse. Par exemple, une souris vasectomisée qui est stérile sur le plan reproductif produit un bouchon de copulation. Les accouplements avec des mâles vasectomisés sont couramment utilisés pour préparer les femelles à recevoir un transfert d’embryon.

Les bouchons de copulation sont transitoires dans le vagin et leur position varie. Les bouchons tombent naturellement pendant le jour de l’accouplement et sont détectés de manière plus fiable dans les 12 premières heures après la copulation. Les laboratoires estiment généralement que le moment de la copulation correspond au point médian de la partie sombre du cycle d’éclairage quotidien de la salle d’élevage. Par exemple, si la pièce est sombre de 19 heures à 7 heures du matin, on estimera que les accouplements ont eu lieu à 1 heure du matin.

La position du bouchon peut aller de très profond dans le vagin à très superficiel. La couleur du plug peut varier de quelque peu translucide à opaque et de blanc à jaune. Les tampons de copulation sont durs et leur surface externe est rugueuse, en forme de galets ou de verre dépoli. Ils ne doivent pas être confondus avec l’épithélium mou, desquamé et cornifié qui est présent dans le vagin à des stades spécifiques du cycle œstral.

Pour bien visualiser le plug, il est recommandé de prendre la souris par la queue et de l’examiner en position verticale, plutôt que de l’examiner dans sa position naturelle, horizontale et debout. Pour évaluer la texture du bouchon et s’assurer qu’il n’est pas placé profondément contre le col de l’utérus, l’utilisation d’un microspeculum à bords arrondis est toujours recommandée. Il est important de nettoyer le spéculum entre les souris pour éviter la propagation des micro-organismes. Une solution saline ou de l’eau stérile est recommandée pour cela car le contact avec les désinfectants chimiques, y compris l’alcool, est très irritant pour la délicate muqueuse vaginale.

Les bouchons sont plus faciles à observer dans certaines souches que dans d’autres. L’illustration de cette planche est une femelle CD1 dont nous estimons qu’elle a été accouplée par un mâle CD1 10 h avant d’être photographiée.

(A) Une vue non assistée du vagin montrant le bouchon de copulation. Le vagin bouché se trouve entre le rectum dorsalement et la vulve ventralement.

(B) La visualisation du bouchon est améliorée si une légère pression vers le bas est appliquée sur la région sacrée de la ceinture pelvienne. Cela projette le vagin et la vulve caudalement et dorsalement pour améliorer la visualisation de leur contenu.

(C) L’utilisation d’un spéculum est importante. Les spatules de micro-pesage à bouts ronds et lisses sont tout à fait adaptées et doivent être essuyées entre les animaux avec une solution stérile non irritante pour la muqueuse vaginale. La profondeur à laquelle le spéculum peut être inséré dans le vagin est un élément de l’évaluation de l’accouplement. S’il s’insère profondément dans le col de l’utérus ferme, il n’y a pas eu d’accouplement. S’il s’insère profondément dans une surface rugueuse, à texture granuleuse, il y a un bouchon profond. Si l’insertion n’est que superficielle, il y a un bouchon. Le spéculum est également utilisé pour évaluer la rugosité et la dureté de la surface du plug de copulation présumé. Ces caractéristiques permettent de distinguer le bouchon de l’épithélium plus doux, postestral, blanc, cornifié et excrété. Enfin, le spéculum peut être utilisé pour rétracter le bord de la vulve, afin d’améliorer la visualisation du bouchon.

Après environ 2 semaines, il est important d’observer les femelles qui ont été appariées avec des mâles mais qui ne présentaient pas de bouchon de copulation pour détecter des signes externes de grossesse. Ce cas est souvent appelé « prise manquée ». Dans les colonies bien gérées, les « bouchons manqués » en gestation devraient être très rares. L’accouplement chez certaines espèces de souris, comme Mus caroli, ne produit pas de bouchon de copulation. Pour ces accouplements, un frottis vaginal est réalisé (voir planche 1) dans les 12 heures suivant l’accouplement estimé. Le frottis est examiné pour détecter la présence de spermatozoïdes. Les spermatozoïdes peuvent être reconnus dans les montages humides non colorés. Un microscope dans la salle d’élevage est le plus utile dans la gestion des accouplements minutés pour ces types de souris.

Plaque 3. Changements physiques dans l’apparence du corps pendant une grossesse de souris – vue dorsale.

(A) Souris femelle normale, non accouplée, jeune adulte.

(B) Jour gestationnel 7,5. Ce stade de la gestation n’est pas reconnu grossièrement. La souris imagée portait une portée de 15 conceptus.

(C) Jour gestationnel 15,5. Ce stade de la gestation est facilement reconnaissable par une augmentation de la taille de l’abdomen. Les conceptus peuvent également être détectés par palpation abdominale. La souris imagée portait une portée de huit conceptus.

(D) Grossesse à terme au jour gestationnel 19,5. En fin de grossesse, l’utérus gravide occupe la majeure partie de l’abdomen, et les conceptus créent des distorsions irrégulières de la paroi abdominale. La souris représentée portait une portée de neuf conceptus. Des études utilisant un enregistrement radiotélémétrique continu ont montré que les niveaux d’activité physique diminuent chez les souris gravides entre les jours de gestation 12,5 et le terme.4 Les mêmes animaux sont représentés dans les planches 3 et 4.

Plaque 4. Changements physiques de l’apparence du corps pendant une grossesse de souris – vue ventrale.

(A) Jeune souris femelle normale, non accouplée. Trois paires de tétines (mamelons) de la glande mammaire thoracique (plus crânienne) et deux paires de tétines inguinales (plus caudale) sont distinctement visibles chez la souris vierge.

(B) Jour gestationnel 7,5. Ce stade de la gestation n’est pas reconnu grossièrement. La souris imagée portait une portée de 15 conceptus.

(C) Jour gestationnel 15,5. Ce stade de la gestation est facilement reconnu par une augmentation de la taille de l’abdomen. La grossesse peut également être détectée par la palpation abdominale des sites d’implantation. La souris imagée portait une portée de huit sites d’implantation.

(D) Grossesse à terme au jour gestationnel 19,5. En fin de grossesse, l’utérus gravide occupe la majeure partie de l’abdomen et chaque site d’implantation est de grande taille. La souris imagée portait une portée de neuf petits. Les mêmes animaux sont représentés dans les planches 3 et 4.

Plaque 5. L’abdomen de la souris enceinte, jours de gestation 5,5-18,5-vue ventrale : paroi abdominale intacte (rangée supérieure : A-D) et paroi abdominale ouverte (rangée inférieure : E-H).

Les mêmes souris sont imagées dans chaque rangée. Dans la rangée supérieure (A-D), la paroi abdominale est intacte. Dans la rangée inférieure (E-H), la paroi abdominale a été ouverte. Sur toutes les images, les mêmes repères anatomiques sont présents. Dans les images (A-D), la linea alba (LA) centrale s’étend axialement dans la paroi abdominale ventrale. Les vaisseaux sanguins épigastriques supérieurs droit et gauche (SE) sont parallèles à la linea alba. Ces vaisseaux s’élargissent au cours de la grossesse pour soutenir le développement de la glande mammaire. Dans (A-H), l’apophyse xyphoïde (sternum), l’arc costal (côtes) et le foie marquent la transition thoracique-abdominale.

(A et E) Jour gestationnel 5,5. Le tractus intestinal et les coussinets graisseux inguinaux (FI) recouvrent l’utérus. Jusqu’à ce jour de gestation, il est difficile de déterminer qu’une souris est enceinte par une évaluation brute de l’abdomen ou de l’utérus. Les sites d’implantation deviennent nettement visibles dans l’utérus de la souris au jour 6,5 de la gestation. La souris imagée portait une portée de neuf conceptus. L’injection de colorant avant l’euthanasie est couramment utilisée à ce stade de la grossesse pour faciliter l’identification et la localisation des sites d’implantation (photo (E), planche 8). Les sites d’implantation sont révélés comme des régions de fuite de colorant, reflétant une perméabilité capillaire accrue là où les blastocystes se sont fixés.1

(B et F) Jour gestationnel 7,5. A ce stade de la grossesse, les coussinets graisseux inguinaux et l’intestin recouvrent l’utérus. La souris imagée portait une portée de 15 sites d’implantation.

(C et G) Jour gestationnel 14,5. À ce stade de la grossesse, l’utérus gravide a distendu l’abdomen et déplacé les coussinets graisseux inguinaux et le tractus intestinal. L’utérus est clairement visible avant l’incision de la paroi abdominale. La souris imagée portait une portée de 12 sites d’implantation.

(D et H) Jour gestationnel 18,5. En fin de grossesse, un jour avant la naissance prévue, l’utérus gravide occupe la majeure partie de la cavité abdominale, déplaçant tous les autres organes. La paroi abdominale est fortement distendue (D), et sa tension retient l’utérus. L’utérus « déborde » de l’abdomen lors de son incision. La souris imagée portait une portée de six conceptus.

Plaque 6. Abdomen ventral de la souris pendant la grossesse, avec la paroi abdominale enlevée et l’utérus gravide reflété caudalement pour montrer les changements typiques d’apparence des vaisseaux utérins au cours de la grossesse.

(A) Jour gestationnel 5,5. Les artères utérines naissent de deux vaisseaux : crânialement des artères ovariennes et caudalement des artères vésicales crâniales, qui naissent des artères iliaques internes. Les artères utérines traversent le mésomètre (ligament suspenseur utérin) parallèlement à chaque corne utérine et sur toute sa longueur. Les artères arquées se ramifient à partir des artères utérines selon un schéma relativement uniforme pour alimenter l’utérus. Ces artères donnent naissance à des artères radiales qui pénètrent à travers la paroi utérine. Pour permettre la réflexion de l’utérus à ce stade précoce de la gestation, les attaches aux extrémités des ovaires ont été coupées. Les ovaires (en rouge) sont présents dans les coussinets graisseux à l’extrémité des cornes utérines réfléchies. La contraction utérine due à la mort et à la baisse de la température corporelle peut imiter les sites d’implantation. Les sites d’implantation ne peuvent pas toujours être comptés avec précision par un examen macroscopique à ce stade gestationnel.

(B) Jour gestationnel 7,5. Dans cette grossesse, contenant 15 conceptus, l’élargissement de l’approvisionnement vasculaire utérin est devenu évident.

(C) Jour gestationnel 14,5. Dans cette grossesse, contenant 12 conceptus, les positions des artères arquées par rapport à la caduque (blanche et proximale aux artères) et au placenta (rose sur la caduque), et les positions du fœtus (renflements antimésométriques), sont apparentes.

(D) Jour gestationnel 18,5. En fin de grossesse, les vaisseaux de l’utérus gravide sont dilatés et turgescents de sang. Dans la plupart des cas, chaque artère est accompagnée de la veine correspondante. Sur ces photographies, seules les veines sont visibles. Chaque artère utérine naît de deux sites. Une extrémité naît de l’artère ovarienne gauche ou droite, qui se ramifie à partir de l’aorte abdominale vers la partie supérieure de l’image présentée. L’autre extrémité provient de l’artère vésicale crânienne, qui se ramifie à partir de l’artère iliaque interne, près du milieu de l’image. Le sang qui s’écoule de cette extrémité se déplace caudalement puis crânialement à mesure que les vaisseaux se courbent pour commencer à alimenter l’utérus et les placentas les plus proches du col de l’utérus (chapitre 31). Les placentas remplis de sang sont clairement visibles dans leur position in situ entre les vaisseaux sanguins maternels et chaque fœtus. La decidua basalis résiduelle est visible sur chaque placenta sous la forme d’une petite zone plus blanche située au centre du placenta, du côté du mésomètre. Les artères arquées ne sont pas de largeur uniforme. Les artères arquées les plus larges alimentent les sites d’implantation. Les artères arquées plus étroites alimentent la paroi utérine entre les sites d’implantation. Les fœtus sont maintenant beaucoup plus grands que leurs placentas. La souris imagée portait une portée de six.

Plaque 7. Naissance au jour gestationnel 19,5.

La même souris est imagée dans chaque panneau de cette planche. Ce n’est qu’au cours de la dissection que la position du premier fœtus dans le col dilaté (canal de naissance) a été notée, indiquant que la parturition avait commencé chez cette femelle.

(A) Abdomen ventral d’une souris péripartum avec la paroi abdominale ouverte ; organes in situ. L’utérus gravide avec neuf conceptus masque la plupart des autres organes abdominaux. Un petit morceau de tractus intestinal est visible entre les deux cornes utérines. Le foie est repoussé crânialement par rapport à un abdomen non gravide. La vessie urinaire est visible. Lors de la dissection, on a observé que le fœtus #1 (flèche) était aligné verticalement le long de la ligne médiane et présent dans le col dilaté (canal de naissance).

(B) Abdomen ventral de la souris péripartum avec l’utérus retiré crânialement. Latéralement à la vessie urinaire, les bords rognés de la paroi abdominale sont visibles. La tête du fœtus n° 1 (flèche) a pénétré dans le col dilaté. La ceinture pelvienne osseuse est intacte sur cette image.

(C) Abdomen ventral de la souris péripartum avec le plancher pelvien enlevé et l’utérus rétracté caudalement pour montrer le canal de naissance. Les vaisseaux utérins sont proéminents ainsi que les détails fœtaux tels que les queues et les doigts. La taille relative de chaque fœtus par rapport à son placenta doit être notée ainsi que le reste blanc de la decidua basalis sur le placenta rouge. La tête du fœtus #1 (flèche) a pénétré dans le col dilaté.

(D) L’utérus péripartum disséqué montre la fourrure du périnée entourant la vulve et le vagin. La tête du fœtus #1 (flèche) est clairement dans le corps utérin et le col de l’utérus, tandis que les parties plus caudales du fœtus restent dans la corne utérine.

Plaque 8. Aspect de l’utérus cycliste et du début de la post-implantation (jours de gestation 4,5-6,5).

Une série de cornes utérines est présentée pour illustrer les changements progressifs de l’aspect de l’utérus au cours du cycle œstral (A et B) et aux jours de gestation 4,5-6,5 après l’implantation (C-F). (E) Un utérus d’une souris au jour de gestation 5,5 qui a reçu une injection intraveineuse de solution colorante Chicago Sky Blue 6B (Sigma Chemical Co., Oakville, ON, Canada) avant d’être euthanasiée pour illustrer la meilleure visualisation des sites d’implantation fournie par cette technique (comparer D à E). L’ovaire est placé en haut de chaque image, la région cervicale est vers le bas, et le mésentère montrant un vaisseau utérin et ses branches est placé à gauche de chaque corne. Des corps jaunes sont présents dans les ovaires au début de la période post-implantation (C, D et F).

(A) La corne utérine diestrale est longue et étroite. Le stade d’œstrus de cette souris donneuse a été confirmé par l’utilisation d’un frottis vaginal (voir planche 1).

(B) La corne utérine œstrée est notablement gonflée. Sa paroi est mince et de couleur pâle. L’utérus peut être assez turgescent et donner l’impression d’être rigide. Il est généralement plus court qu’une corne non œstrée. Le stade d’œstrus de cette souris donneuse a été confirmé par l’utilisation d’un frottis vaginal (voir planche 1).

(C) Les sites d’implantation ne sont pas visibles à l’œil nu au jour de gestation 4,5.

(D) Bien que le gonflement du site d’implantation puisse être apparent au jour de gestation 5.5, la contraction post-mortem de l’utérus à température ambiante ou s’il est placé dans un milieu réfrigéré peut donner une apparence très similaire.

(E) Comme il est difficile de visualiser les sites d’implantation précoces, l’injection de colorant juste avant l’euthanasie peut être utilisée pour aider à la localisation du site d’implantation. Comme l’implantation est associée à une néoangiogenèse et à une fuite vasculaire, les taches de colorant indiqueront les sites d’implantation. La donneuse de cet utérus du jour de gestation 5,5 a reçu une injection dans la veine jugulaire externe de 0,2 ml de solution Chicago Sky Blue 6B à 10% (pt/vol) dans du sérum physiologique 2 minutes avant l’euthanasie. Cinq sites bleu plus foncé peuvent être identifiés entre l’ovaire et le col de l’utérus. Notez le schéma de ramification des artères utérines dans le mésentère.

(F) Les sites d’implantation individuels sont clairement visibles au jour 6,5 de la gestation. C’est le stade le plus précoce qui peut être disséqué, comme décrit pour le jour gestationnel 7,5 dans la planche 1 du chapitre 2.

Plaque 9. Aspect de l’utérus gravide des jours de gestation 7,5-12,5.

Une série de cornes utérines est présentée pour illustrer les changements progressifs de l’aspect de l’utérus entre les jours de gestation 7,5 et 12,5. (A-C) Les étapes au cours desquelles se produit le développement du placenta. (D-F) Les stades les plus précoces avec un placenta anatomiquement complet et fonctionnel. L’ovaire est placé en haut de chaque image, la région cervicale est vers le bas et le mésentère contenant les vaisseaux utérins est placé à gauche de chaque corne.

(A) Les sites d’implantation du jour gestationnel 7,5 sont de forme ovale et contiennent un embryon à stries primitives de forme cylindrique qui est soutenu par des trophoblastes envahissants et d’autres membranes. Les trophoblastes du mésomètre, qui sont les primordia du placenta, forment le cône ectoplasmique. L’invasion du cône ectoplacentaire entraîne la formation d’un centre hémorragique dans chaque site d’implantation. Cette crypte embryonnaire n’est généralement pas visible à travers la paroi utérine, mais une hyperémie du côté mésométrial de l’utérus est généralement détectable.

(B) Les sites d’implantation du jour gestationnel 8,5 ont un aspect rond distinct et contiennent un embryon qui a pris une forme globulaire au fur et à mesure que les somites se différencient, que l’allantoïde se développe vers le primordium placentaire et que l’embryon tourne. Les artères utérines sont proéminentes et leurs branches vers les sites d’implantation sont plus larges que leurs branches vers le tissu utérin entre les sites d’implantation. Les côtés mésométriaux des sites d’implantation sont plus pâles que les côtés antimésométriaux. Cette gradation de couleur facilite l’orientation pendant la dissection. La zone la plus hyperémique est centrale et on pense qu’elle représente la limite de l’invasion du trophoblaste. La decidua basalis donne la couleur la plus pâle puisqu’elle persiste alors que la decidua antimésométriale régresse.

(C) Les sites d’implantation du jour gestationnel 9,5 montrent un élargissement continu, avec peu ou pas d’espace restant maintenant entre les sites adjacents dans les cornes détenant de grandes portées. Des régions pâles proéminentes peuvent être reconnues à travers la paroi utérine où les vaisseaux maternels entrent et sortent. Cela représente le développement initial d’une zone transitoire enrichie en leucocytes qui se développe entre les couches musculaires lisses circulaires et longitudinales à chaque site d’implantation.

(D) Les sites d’implantation du jour gestationnel 10,5 sont plus grands. Le placenta a maintenant un approvisionnement en sang fonctionnel.

(E) Les sites d’implantation du jour gestationnel 11,5 montrent une croissance continue du placenta et du fœtus. La position du placenta est maintenant clairement apparente à l’examen externe de l’utérus.

(F) Le jour gestationnel 12,5, les sites d’implantation montrent une taille croissante du fœtus et du placenta. Le placenta apparaît de couleur rouge plus foncée à mesure que la gestation se poursuit.

Plaque 10. Aspect de l’utérus gravide des jours de gestation 13,5-18,5.

Une série de cornes utérines est présentée pour illustrer les changements progressifs de l’aspect de l’utérus entre les jours de gestation 13,5 et 18,5 (A-F). Le placenta est mature sur toutes ces images. La croissance fœtale se poursuit rapidement alors que l’augmentation de la taille globale du placenta est limitée. Ainsi, le rapport placenta-fœtus diminue au cours de la seconde moitié de la grossesse de la souris. Au cours de ces jours de gestation, la région labyrinthique du placenta s’agrandit tandis que la decidua basalis régresse. La paroi utérine devient très fine en raison de la taille croissante de chaque site d’implantation. De nombreux détails fœtaux, tels que les queues et les membres, sont visibles sans incision de la paroi utérine. Lors des dissections pour enlever la paroi utérine, il est très facile d’entailler la cavité amniotique, qui s’évacue rapidement grâce à la force de contraction de la paroi utérine. L’ovaire est placé en haut de chaque image, la région cervicale est vers le bas, et le mésentère contenant les vaisseaux utérins est placé à gauche de chaque corne.

(A) Une corne utérine du jour de gestation 13,5 contenant huit sites d’implantation.

(B) Une corne utérine du jour de gestation 14,5 contenant cinq sites d’implantation viables. Un sixième site d’implantation proximal au col de l’utérus est dans un état avancé de résorption. Un échec sporadique des sites d’implantation est observé occasionnellement dans la plupart des souches. Chez les souris normales, cela ne compromet généralement pas le reste de la portée. Le gain de longueur fœtale est maintenant évident selon un axe parallèle à la longueur de la corne utérine.

(C) Une corne utérine du jour de gestation 15,5 contenant sept sites d’implantation. On observe un encombrement qui fait tourner certains fœtus par rapport aux autres.

(D) Une corne utérine du jour de gestation 16,5 contenant huit sites d’implantation.

(E) Une corne utérine du jour de gestation 17,5 contenant sept sites d’implantation. L’encombrement dû à la croissance du fœtus devient plus évident. Les vaisseaux recouvrant les fœtus ne sont pas dérivés de la mère et ne se trouvent pas dans la paroi utérine. Ils sont plutôt dérivés du conceptus et se trouvent dans les membranes fœtales. Le gain de vascularisation du labyrinthe placentaire est évident par la couleur rouge plus foncée du placenta vu à travers la paroi utérine.

(F) Une corne utérine du jour gestationnel 18,5 contenant trois sites d’implantation.

Plaque 11. L’utérus post-partum.

Si une souris mâle fertile est présente dans la cage d’une femelle gravide et qu’elle accouche, elle peut être accouplée pendant l’œstrus post-partum qui se produit dans les 24 h suivant l’accouchement. Dans la rangée supérieure (A), un utérus de souris estimé à 10 heures post-partum est représenté. Dans la rangée inférieure (B), on voit l’utérus d’une souris estimé à 48 heures post-partum. Ce dernier animal n’était pas logé avec un mâle.

(A) La vue dorsale de l’utérus involuant 10 h après la livraison d’une portée de 11 petits viables. On observe une bande musculaire longitudinale proéminente le long des cornes utérines. Les sites de fixation de chaque placenta restent distincts sous la forme d’une série de petites marques mésométriales rouge foncé. L’utérus reste gonflé.

(A-i) et (A-ii) Les vues latérales des cornes du même utérus présenté en (A) et leur vascularisation.

(B) La vue dorsale de l’utérus involuant 48 h après la livraison d’une portée de 11 petits viables. Les cornes utérines ont considérablement changé au cours des 48 h suivant la parturition, sauf aux sites de l’ancienne fixation placentaire. Celles-ci restent distinctes mais beaucoup moins proéminentes qu’en (A). Les sites d’attachement placentaire sont devenus gris-verdâtre, indiquant une régénération normale du tissu utérin.

(B-i) et (B-ii). Les vues latérales des cornes du même utérus présenté en (B) et leur vascularisation. Notez que les ovaires dans chaque image montrent plusieurs corpora hemorrhagica rouge vif indiquant l’ovulation post-partum typique observée chez les souris.

Plaque 12. Apparition des sites d’implantation au début du processus de retard de croissance fœtal et d’échec du site d’implantation.

L’évaluation visuelle brute de l’utérus gravide d’une souris normale révélera s’il existe une hétérogénéité de taille ou de couleur entre les sites d’implantation. Les sites qui sont plus petits et/ou plus pâles sont probablement anormaux et ont une très forte probabilité de résorption avant la naissance du reste de la portée. Ceci est difficile à établir jusqu’au jour 7,5 de la gestation environ. Du jour 8,5 au terme de la gestation, il est plus facile et important de l’observer. Un ou plusieurs sites d’implantation dans l’une ou l’autre ou les deux cornes peuvent être concernés. Ce n’est que par l’euthanasie et l’étude de l’utérus gestationnel ou l’échographie que l’échec de la gestation post-implantatoire peut être avancé pour expliquer les petites portées à la naissance ou les longs intervalles entre les portées chez les couples reproducteurs. La collecte d’utérus aux stades indiqués dans cette planche devrait permettre de récupérer suffisamment de matériel de conceptus pour le génotypage ou pour une histologie informative. Ceci est particulièrement important pour le développement de nouvelles souches de souris modifiées.

(A) Corne utérine au jour de la gestation 9,5 montrant deux sites de résorption (flèche) et quatre sites d’implantation viables.

(B) Corne utérine au jour de la gestation 10,5 montrant un site de résorption (flèche) et quatre sites d’implantation viables.

(C) Corne utérine au jour de la gestation 10,5 montrant trois sites de résorption (flèche) et quatre sites d’implantation viables.

(D) Corne utérine au jour gestationnel 11,5 montrant quatre sites de résorption (flèche) et deux sites d’implantation viables.

(E) Corne utérine au jour gestationnel 11,5 montrant quatre sites de résorption (flèche) et trois sites d’implantation viables.

(F) Corne utérine au jour gestationnel 11,5 montrant deux sites d’implantation résorbables (flèche) et deux sites d’implantation viables.

Plaque 13. Apparition de sites d’implantation tard dans le processus de mort fœtale et de résorption du site d’implantation.

L’évaluation visuelle brute de l’utérus gravide d’une souris normale révélera si de grands ou de petits sites d’implantation hémorragiques à noirs se trouvent parmi une portée. Cette observation est plus facile à faire après le jour de gestation 7,5, lorsque la caduque antimésométriale commence à s’amincir et que la croissance des fœtus provoque un étirement et un amincissement de la paroi utérine. Les sites qui sont hémorragiques à noirs indiquent la mort du fœtus et le processus de résorption du site d’implantation. Si de grands fœtus de couleur saine restent dans l’utérus, ils seront probablement portés à terme malgré la mort d’un ou plusieurs membres de la portée. Alors que l’euthanasie et l’étude de l’utérus gestationnel permettent aux investigateurs de noter les sites d’implantation résorbés par rapport aux sites viables à une date d’étude spécifique, des informations histologiques ou génétiques significatives sont difficiles à obtenir à partir de sites d’échec avancé.

(A) Corne utérine au jour gestationnel 11,5 montrant trois sites d’implantation résorbés (flèche) et trois sites d’implantation viables.

(B) Corne utérine au jour gestationnel 12,5 montrant quatre sites d’implantation résorbés (flèche) et trois sites d’implantation viables.

(C) Corne utérine au jour gestationnel 12,5 montrant trois sites d’implantation résorbables (flèche) et trois sites d’implantation viables.

(D) Corne utérine au jour gestationnel 15,5 montrant un site d’implantation résorbable (flèche) et deux sites d’implantation viables.

(E) Corne utérine au jour de la gestation 13,5 montrant deux sites de résorption (flèche) et un site d’implantation viable.

(F) Corne utérine au jour de la gestation 17,5 montrant deux sites de résorption (flèche) et trois sites d’implantation viables.

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